Écologie microbienne des chambres d'isolement protecteur : Air et surfaces
DOI :
https://doi.org/10.62438/tunismed.v102i7.4807Mots-clés :
écologie microbienne , chambre d’isolement protecteur , patient immunodéprimé , infections associées aux soinsRésumé
Introduction : Les infections associées aux soins représentent un grand fardeau pour la santé publique, entraînant morbidité, mortalité, séjours prolongés à l'hôpital et coûts sociaux et économiques substantiels. Les patients immunodéprimés présentent un risque accru d'infections nosocomiales.
Objectif : Cette étude prospective menée au CHU Mohammed VI d'Oujda avait pour objectif d'évaluer l'écologie microbienne des surfaces et de l'air dans une chambre d’isolement protecteur comparée à une chambre d'hospitalisation double.
Méthodes : Le prélèvement de l'air a été réalisé en utilisant la méthode de sédimentation et de collision avec l'aide de Microflow Alpha. Le programme de collecte utilisé était fixé à 10 minutes pour 1 m3. Pour l'échantillonnage de surface, des écouvillons ont été prélevés sur une surface de 25 cm2. Ils ont été immédiatement acheminés au laboratoire de microbiologie. Nous avons procédé à l’identification macroscopique et microscopique des colonies avant l’identification biochimique définitive par l’automate BD phoenixTM. L’étude de la sensibilité aux antibiotiques a été réalisée par diffusion sur gélose Muller Hinton et par la détermination de la concentration minimale inhibitrice.
Résultats : Les résultats ont révélé un nombre réduit de bactéries dans la chambre d'isolement protecteur par rapport à la chambre d'hospitalisation ordinaire. Nous avons pu noter la prédominance de staphylocoques à coagulase négative et de Bacillus spp. Staphylococcus aureus et Aspergillus spp, des agents pathogènes courants dans les infections associées aux soins, étaient notablement absents dans la chambre d'isolement protecteur. Ces résultats mettent en évidence l'importance des environnements....( résumé tronqué à 250 mots)
Téléchargements
Références
Cassini A, Plachouras D, Eckmanns T, Abu Sin M, Blank HP, Ducomble T, et al. Burden of Six Healthcare-Associated Infections on European Population Health: Estimating Incidence-Based Disability-Adjusted Life Years through a Population Prevalence-Based Modelling Study. PLoS Med. 2016 Oct 18;13(10):e1002150.
Vandendaele P, Langerock A, White WC, Krueger J. Reducing microbial contamination in hospital blankets: a contribution to combat nosocomial infections (hospital infections). In: Medical textiles and biomaterials for healthcare. Elsevier; 2006. p. 177–86.
Pasquarella C, Pitzurra O, Savino A. The index of microbial air contamination. Journal of hospital infection. 2000;46(4):241–56.
Pasquarella C, Pitzurra O, Savino A. The index of microbial air contamination. Journal of Hospital Infection. 2000 Dec;46(4):241–56.
Moore G, Griffith C. Problems associated with traditional hygiene swabbing: the need for in‐house standardization. J Appl Microbiol. 2007;103(4):1090–103.
Moore G, Griffith C. Factors influencing recovery of microorganisms from surfaces by use of traditional hygiene swabbing. Dairy Food and Environmental Sanitation. 2002;22(6):410–21.
Gaur P, Hada V, Rath RS, Mohanty A, Singh P, Rukadikar A. Interpretation of antimicrobial susceptibility testing using European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST) and Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) breakpoints: analysis of agreement. Cureus. 2023;15(3).
Talon D. The role of the hospital environment in the epidemiology of multi-resistant bacteria. Journal of Hospital Infection. 1999;43(1):13–7.
Sakr A, Brégeon F, Mège JL, Rolain JM, Blin O. Staphylococcus aureus nasal colonization: an update on mechanisms, epidemiology, risk factors, and subsequent infections. Front Microbiol. 2018;9:2419.
Ungureanu A, Zlatian O, Mitroi G, Drocaş A, Ţîrcă T, Călina D, et al. Staphylococcus aureus colonisation in patients from a primary regional hospital. Mol Med Rep. 2017;16(6):8771–80.
Surv_microbio_environnement.pdf [Internet]. [cité 26 mai 2024]. Disponible sur: https://www.cpias-nouvelle-aquitaine.fr/wp-content/uploads/2015/08/Surv_microbio_environnement.pdf
Wilde J, Van R, Pickering L, Eiden J, Yolken R. Detection of rotaviruses in the day care environment by reverse transcriptase polymerase chain reaction. Journal of Infectious Diseases. 1992;166(3):507–11.
Hall CB, Douglas Jr RG, Geiman JM. Possible transmission by fomites of respiratory syncytial virus. Journal of Infectious Diseases. 1980;141(1):98–102.
Boyce JM, Potter-Bynoe G, Chenevert C, King T. Environmental contamination due to methicillin-resistant Staphylococcus aureus possible infection control implications. Infect Control Hosp Epidemiol. 1997;18(9):622–7.
Rampling A, Wiseman S, Davis L, Hyett AP, Walbridge AN, Payne GC, et al. Evidence that hospital hygiene is important in the control of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Journal of Hospital Infection. 2001;49(2):109–16.
Weber DJ, Rutala WA. Role of environmental contamination in the transmission of vancomycin-resistant enterococci. Infect Control Hosp Epidemiol. 1997;18(5):306–9.
Oie S, Kamiya A. Survival of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) on naturally contaminated dry mops. Journal of Hospital Infection. 1996;34(2):145–9.
Jawad A, Heritage J, Snelling AM, Gascoyne-Binzi DM, Hawkey PM. Influence of relative humidity and suspending menstrua on survival of Acinetobacter spp. on dry surfaces. J Clin Microbiol. 1996;34(12):2881–7.
Wendt C, Dietze B, Dietz E, Rüden H. Survival of Acinetobacter baumannii on dry surfaces. J Clin Microbiol. 1997;35(6):1394–7.
Jawad A, Seifert H, Snelling AM, Heritage J, Hawkey PM. Survival of Acinetobacter baumannii on dry surfaces: comparison of outbreak and sporadic isolates. J Clin Microbiol. 1998;36(7):1938–41.
Noskin GA, Stosor V, Cooper I, Peterson LR. Recovery of vancomycin-resistant enterococci on fingertips and environmental surfaces. Infect Control Hosp Epidemiol. 1995;16(10):577–81.
Wendt C, Wiesenthal B, Dietz E, Rüden H. Survival of vancomycin-resistant and vancomycin-susceptible enterococci on dry surfaces. J Clin Microbiol. 1998;36(12):3734–6.
Wagenvoort JHT, Sluijsmans W, Penders RJR. Better environmental survival of outbreak vs. sporadic MRSA isolates. Journal of Hospital Infection. 2000;45(3):231–4.
Gonsu KH, Guenou E, Toukam M, Ndze VN, Mbakop CD, Tankeu DN, et al. Bacteriological assessment of the hospital environment in two referral hospitals in Yaoundé-Cameroon. Pan Afr Med J. 2015;20.
el ayne Nabila S, Adil E, Abedelaziz C, Nabila A, Samir H, Abdelmajid S. ROLE DE l’environnement hospitalier dans la prévention des infections nosocomiales: surveillance de la flore des surfaces a l’hopital el idrissi de kenitra-maroc. Eur Sci J. 2014;10(9).
Guo Y, Song G, Sun M, Wang J, Wang Y. Prevalence and therapies of antibiotic-resistance in Staphylococcus aureus. Front Cell Infect Microbiol. 2020;10:107.
Nseir S, Blazejewski C, Lubret R, Wallet F, Courcol R, Durocher A. Risk of acquiring multidrug-resistant Gram-negative bacilli from prior room occupants in the intensive care unit. Clinical microbiology and infection. 2011;17(8):1201–8.
Mora M, Mahnert A, Koskinen K, Pausan MR, Oberauner-Wappis L, Krause R, et al. Microorganisms in confined habitats: microbial monitoring and control of intensive care units, operating rooms, cleanrooms and the International Space Station. Front Microbiol. 2016;7:209207.
Hamza R. Épidemiologie des infections associées aux soins. Revue Tunisienne d’Infectiologie-Janvier. 2010;4:1–4.
Fichiers supplémentaires
Publiée
Numéro
Rubrique
Catégories
Licence
Merci de créditer les auteurs lors de toute citation : La Tunisie Médicale (2024)
Ce travail est disponible sous licence Creative Commons Attribution - Pas d'Utilisation Commerciale - Pas de Modification 4.0 International.
