Activités Antifongique des Extraits des Feuilles et des Cônes de Pinus halepinsis de Tlemcen Nord-Ouest Algérien
DOI :
https://doi.org/10.62438/tunismed.v103i12.5998Mots-clés :
Pinus halepensis, feuilles, cones, activité antifongique, acide gallique.Résumé
Contexte: les plantes constituent une source inépuisable de molécules chimiques présentant une diversité d’activités biologiques. Dans ce contexte, notre étude porte sur l’effet antifongique des extraits aqueux des feuilles et des cônes de Pinus halepensis, ainsi que d’une substance bioactive (l’acide gallique), sur des champignons pathogènes : Trichophytonrubrum, Microsporum canis et Candida albicans.
Méthodes : les méthodes utilisées incluent le contact direct et la diffusion sur des boîtes de Petri gélosées. Des tests antifongiques ont été réalisés à partir d'extraits aqueux
Résultats :les souches étudiées se sont révélées sensibles aux extraits aqueux des feuilles et des cônes de P. halepensis.L’extrait aqueux des feuilles et des cônes de P. halepensis à 200 mg/ml a montré une activité fongicide notable, avec des pourcentages d’inhibition respectifs de 62 % et 58 % sur T. rubrum, et de 80 % et 65 % sur M. canis. L’effet de l’acide gallique s’est avéré moins significatif sur les deux dermatophytes. La souche C. albicanss’est particulièrement montrée sensible aux extraits de feuilles de P. halepensis, avec des zones d’inhibition atteignant 18 mm de diamètre.
Conclusion : Ces résultats suggèrent que les extraits de P. halepensis pourraient constituer une solution alternative dans le traitement des dermatoses mycosiques et utiliser une étude in vivo comme perspective
Téléchargements
Références
Chabasse D, Bastide JM, Bouchara JP, De Gentile L, Symoens F. Parasitoses et mycoses des régions tempérées et tropicales. Paris: Elsevier-Masson; 2010.
Monod M, Fratti M, Staib P, Baudraz-Rosselet F, Toutous-Trellu L. Dermatophytes transmis par les animaux domestiques. Rev Med Suisse. 2014;10:321–5.
Drouhet E, Dupont B. Mycoses in AIDS patients: an overview. In: Mycoses in AIDS patients. 1990. p. 27-53.
Guillot J, Bensignor E, Chermette R. Dermatopytoses in dogs. Point Vet. 2013;44(Special):72-7.
Joshi B, Panda SK, Jouneghani RS, Liu M, Parajuli N, Leyssen P, et al. Antibacterial, antifungal, antiviral, and anthelminticactivities of medicinal plants of Nepal selectedbased on ethnobotanicalevidence. Evid Based Complement Alternat Med. 2020;2020:1043471.
Zhou X, Zeng M, Huang F, Qin G, Song Z, Liu F. The potentialrole of plant secondarymetabolites on antifungal and immunomodulatoryeffect. Appl MicrobiolBiotechnol. 2023;107(14):4471-92.
Chabasse D, Contet-Audonneau N. Examen direct et place de l'histologie en mycologie. Rev Fr Lab. 2003;357:49-54.
Trease E, Evans W. Pharmacognosie. London: Billiaire Tindall; 1987.
Espinel-Ingroff A, Shadomy S, Pfaller M, Rinaldi MG, Fothergill A, Peter J, et al. Standardization of antifungalsusceptibilitytesting and clinical relevance. Med Mycol. 1998;36:68-78.
Essalmani H, Lahlou H. Mécanismes de bioprotection des plantes de lentille par Rhizobium leguminosarum contre Fusarium oxysporum f. sp. lentis. C R Biol. 2003;326(12):1163-73.
Eymard S. Mise en évidence et suivi de l'oxydation des lipides au cours de la conservation et de la transformation du chinchard (Trachurustrachurus): choix des procédés [thèse]. Nantes: Université de Nantes; 2003.
Ouraïni D, Hadj-Mahammed M, Selles C, Kabouche Z, Touil-Boukoffa C. Étude de l’activité des huiles essentielles de plantes aromatiques à propriétés antifongiques sur les différentes étapes du développement des dermatophytes. Phytother. 2005;3(4):147-57.
Wang J. Carbon‐nanotube basedelectrochemicalbiosensors: A review. Electroanalysis. 2005;17(1):7-14.
Chabasse D, Contet-Audonneau N. Dermatophytes et dermatophytoses. Paris: Elsevier Masson; 2011.
Mohamed AA, Behiry SI, Ali HM, El-Hefny M, Salem MZ, Ashmawy NA. Phytochemical compounds of branches from P. halepensis oilyliquidextract and S. terebinthifolius essential oil and theirpotentialantifungalactivity. Processes. 2020;8(3):330.
Hsu H, Sheth CC, Veses V. Herbalextractswithantifungalactivityagainst Candida albicans: A systematicreview. Mini Rev Med Chem. 2021;21(1):90-117.
El Omari N, Guaouguaou FE, El Menyiy N, Benali T, Aanniz T, Chamkhi I, et al. Phytochemical and biologicalactivities of Pinus halepensis Mill., and theirethnomedicinal use. J Ethnopharmacol. 2021;268:113661.
Mansour DH, Hamdi PY. Évaluation chimique et activité antidermatophyte de quelques plantes médicinales d’Algérie. 2014.
Saraka AI, Koné MW, Traoré D, Kouadio YJ, Kamanzi K. Enquête ethnobotanique sur les Euphorbiaceae médicinales utilisées chez les Baoulé du District de Yamoussoukro (Côte d'Ivoire). J Appl Biosci. 2018;126:12734-48.
Mei A, Ricciardo B, Raby E, Kumarasinghe SP. Plant-basedtherapies for dermatophyte infections. Tasman Med J. 2022;4(3):21-37.
Derbali F, Hammami ST, Algabr M, Elaieb MT, Hamrouni L. Chemical composition, insecticidal and antifungalactivities of Pinus halepensis Mill. and Acacia cyanophyllasp. wood tars. Heliyon. 2024;10(6).
Eloff JN. Avoidingpitfalls in determiningantimicrobialactivity of plant extracts and publishing the results. BMC ComplementAltern Med. 2019;19(1):106.
Liberato I, Lino LA, Souza JK, Neto JB, Sá LG, Cabral VP, et al. Gallic acid leads to celldeath of Candida albicans by the apoptosismechanism. Future Microbiol. 2022;17(8):599-606.
Fichiers supplémentaires
Publiée
Numéro
Rubrique
Catégories
Licence
Merci de créditer les auteurs lors de toute citation : La Tunisie Médicale (2026)
Ce travail est disponible sous licence Creative Commons Attribution - Pas d'Utilisation Commerciale - Pas de Modification 4.0 International.
