Apport de la technique polymérase chain réaction dans le dépistage du paludisme en tunisie.
Mots-clés :
Paludisme, dépistage, frottis sanguin, goutte épaisse, PCR, Tunisie.Résumé
RESUMEPrérequis : En Tunisie, le dépistage du paludisme repose sur l’examen microscopique de la goutte épaisse et du frottis sanguin. Cependant, la performance de ce diagnostic est étroitement liée à l’expérience du biologiste et à la parasitémie.
But : L’objectif de cette étude était d’évaluer l’apport de la PCR dans le cadre du dépistage du paludisme.
Méthodes : Cette étude prospective a concerné 260 étudiants originaires de zones d’endémie palustres et qui ont eu un dépistage du paludisme entre septembre 2011 et juin 2013. Chaque sujet a eu un prélèvement sanguin qui a fait l’objet d’une goutte épaisse, d’un frottis sanguin et d’une PCR nichée multiplex.
Résultats : La PCR a permis de détecter la présence du Plasmodium dans 13 prélèvements sanguins (5%). Alors que la microscopie n’était positive que dans 9 cas (3,5%). Les discordances concernaient cinq échantillons négatifs en microscopie et qui étaient positifs en PCR et un échantillon négatif en PCR et positif à la microscopie. Une infection mixte à Plasmodium falciparum et à Plasmodium malariae a été identifiée par PCR. Pour ce dernier cas, la microscopie n’a permis de
diagnostiquer que l’espèce Plasmodium falciparum.
Conclusion : La PCR est plus performante que la microscopie dans la détection des parasitémies faibles ; particulièrement observées chez les sujets asymptomatiques. Son introduction permet de diminuer le portage asymptomatique du Plasmodium et de réduire le risque d’une reprise de la transmission de cette parasitose dans notre pays.
Téléchargements
Références
Chadli A, Kennoun MF, Kooli J. Le paludisme en Tunisie: Historique et état actuel. Bull Soc Pathol Exot 1985; 78:844-51.
Chahed MK, Bouratbine A, Krida G, Ben Hamida A. Réceptivité de la Tunisie au paludisme après son éradication: analyse de la situation pour une adéquation de la surveillance. Bull Soc Pathol Exot 2001; 94:271-6.
Bouratbine A, Chahed Mk, Aoun K, Krida G, Ayari S, Ben Ismail R. Imported malaria in Tunisia. Bull Soc Pathol Exot 1998; 3:203-7.
Delaunay P, Estran-Pomares C, Marty P. Diagnostic du paludisme : frottis sanguin, goutte épaisse et tests antigéniques. Med et Mal Infect 2008; 38:121-3.
De Gentile L, Geneviève F. Le paludisme d'importation: diagnostic au laboratoire. Rev Fr Lab 2000; 321:25-9.
Berry A, Iriat X, Magnaval JF. Nouvelles méthodes de diagnostic du paludisme. Rev Franc Lab 2009; 416:65-70.
OMS. Basic malaria microscopy: Part I Learner' guide; Part II tutor's guide. World Health Organization, Geneva 1991.
Snounou G, Viriyakosol S, Zhu XP, et al. High sensitivity of detection of human malaria parasites by the use of nested polymerase chain reaction. Mol Biochem Parasitol 1993; 61:315-20.
Berry A, Fabre R, Benoit-Vical F, Cassaing S, Magnaval JF. Contribution of PCR-based methods to diagnosis and management of imported malaria. Med Trop 2005; 65:176-83.
Brown AE, Kain KC, Pipithkul J, Webster HK. Demonstration by the polymerase chain reaction of mixed Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax infections undetected by conventional microscopy. Trans R Soc Trop Med Hyg 1992; 86:609-12.
Snounou G. Detection and identification of the four malaria parasite species infecting humans by PCR amplification. Methods Mol Biol 1996; 50:263-91.
Proux S, Suwanarusk R, Barends M, et al. Considerations on the use of nucleic acid-based amplification for malaria parasite detection. Malar J 2011; 10:323.
Vivek J, Muralidhar V, Sudha V, Alvin M. Comparison of the clinical profile and complications of mixed Malarial infections of Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax versus Plasmodium falciparum mono-infection. Sultan Qaboos Univ Med J 2001; 11(3):377-82.
Aoun K, Siala E, Tchibkere D, et al. Paludisme d'importation en Tunisie: conséquences sur le risque de réintroduction de la maladie. Med Trop 2010; 70:33-7.
Ghazi K, Rhaiem A, Bouatour A. Effet de la qualité des eaux sur l'expression du potentiel biotique du moustique Culex pipiens dans la région de Ben Arous. Bulletin de la société entomologique de France 1997; 102:143-50.
Bouattour A, Rhaiem A, Bach Hamda D. Etude de la capacité vectorielle d'anophèles labranchiae dans la région de Nefza. Rapport du programme de recherche de l'Institut Pasteur de Tunis, soutenu par la coopération française et Agence National de la protection de l'environnement 1993; 1:54-60.
Baldari M, Tamburro A, Sabatinelli G, et al. Malaria in Maremma, Italy.Lancet 1998; 351:1246-7.
Maldonaldo Y A, Nahlen BL, Roberto RR, et al. Transmission of Plasmodium vivax malaria in San Diego County, California, 1986. Am J Trop Med Hyg 1990; 42(1):3-9.
19 Mantel CF , Klose C, Scheurer S, Vogel R, Wesirow AL, Bienzle U. Plasmodium falciparum malaria acquired in Berlin, Germany. Lancet 1995; 346:320-1.
Ciceron L, Jaureguiberry G, Gay F, Danis F. Development of a Plasmodium PCR for monitoring efficacy of antimalarial treatment. J Clin Microbiol 1999; 37:35-8.Tableau 1 : Séquences des amorces utilisées pour la PCR spécifique des espèces plasmodiales
